ОТБОР И ХРАНЕНИЕ ЧИСТЫХ КУЛЬТУР БАЗИДИОМИЦЕТОВ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ АГАРОВЫХ ДИСКОВ

ВВЕДЕНИЕ 5

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 7
1.1 Тип Basidiomycota 7
1.2 Характеристика основных свойств 7
1.2.1 Съедобные грибы 8
1.2.2 Разлагающие базидиомицеты 9
1.2.3 Токсичные базидиомицеты 9
1.2.4 Симбиотические базидиомицеты 10
1.2.5 Патогенные базидиомицеты 11
1.2.6 Лекарственные базидиомицеты 11
1.3 Биологически активные полисахариды из грибов 13
1.4 Процедура очистки полисахаридов из лекарственных грибов 14
1.5 Структурный состав противоопухолевых полисахаридов грибов 14
1.6 Взаимосвязь структуры и противоопухолевой активности полисахаридов грибов 16
1.7 Активация полисахаридов грибов химическим модифицированием 17
1.8 Тестирование противоопухолевой и иммуномодулирующей активности полисахаридов грибов 19
1.9 Механизмы противоопухолевого и иммуномодулирующего действия полисахаридов грибов 20
1.10 Хранение чистых жизнеспособных культур 21
1.10.1 Методы непродолжительного хранения 21
1.10.1.1 Метод перевиваемых культур, рекультивирование 22
1.10.1.2 Хранение под минеральным маслом 23
1.10.1.3 Хранение в воде и водно-солевых растворах 23
1.10.1.4 Высушивание на твердых носителях 24
1.10.1.5 Замораживание при температуре ниже точки кристаллизации воды 24
1.10.2 Методы длительного хранения 25
1.10.2.1 Консервация замораживанием при низких температурах 25
1.10.2.2 Консервация высушиванием из замороженного состояния 25
1.10.2.3 Консервирование высушиванием из жидкого состояния 26

2. ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ 28
2.1 Объекты исследования 28
2.2 Условия выращивания 28
2.3 Оценка сохранности культур 29
2.4 Выделение полисахаридов 30
2.5 Методы выделения агарициновой кислоты 31
2.6 Технология получения биологически активных веществ (БАВ) из плодовых тел лиственничной губки (F. officinalis) 31
2.6.1 Способ получения экстракта лиственничной губки 31
2.6.2 Получение водно-спиртового экстракта лиственничной губки 32
2.6.3 Способ получения биофлавоноидов 32
2.6.4 Выделение полисахаридов гриба лиственничной губки 32
2.6.5 Водная экстракция меланина 32
2.7 Обработка результатов 33

3. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ 34
3.1 Первичное культивирование базидиомицетов 34
3.2 Морфология лиственничной губки, трутовика лиственничного Fomitopsis officinalis, трутовика «полотенце» 35
3.3 Извлечение биологически активных веществ из плодовых тел, мицелия и культуральной жидкости лиственничной губки 40
3.4 Совершенствование метода получения агарициновой кислоты 42
3.5 Исследование методов хранения 42
3.6 Повторное культивирование активных культур 44

ВЫВОДЫ 52
СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ 53

ПРИЛОЖЕНИЕ 65

Весь текст будет доступен после покупки

В последнее десятилетие просматривается тенденция развития современной фармакологической индустрии в создании лекарственных средств, получаемых из природного сырья. Мировой фармацевтический рынок остро нуждается в новых лекарственных препаратах, пригодных для борьбы с трудноизлечимыми болезнями. Одним из источников таких препаратов могут стать грибы – микро и макромицеты. Если первые широко используются (синтез антибиотиков и др.), то препараты из макромицетов в России пока имеют небольшой ассортимент. Пополнение рынка фармацевтических препаратов возможно за счет разрабатываемых БАДов, когда в качестве продуцентов используются биологически активные вещества макромицетов [2].
Кроме широко известных трех грибов (шиитаке, ганодерма, кордицепс, лиственничная губка), сейчас в разных странах используются еще около двух десятков макромицетов, в частности базидиомицетов, в форме чая и различных экстрактов или выделенных чистых веществ: полисахаридов, пептидов, гликозидов, антибиотиков [14].
Базидиомицеты являются потенциальными «клеточными фабриками» благодаря наличию генов, экспрессирующих широкий спектр ферментов, а также содержанию в клетках большого количества полезных веществ. Отличительным свойством этих видов является их способность разлагать лигнин, что определяет их популярность в промышленных производствах, выпускающих различные биопрепараты [7].
Эффективная работа с культурами базидиомицетов требует их надежного источника, что обеспечивается их безопасным долгосрочным хранением.
Это подразумевает фундаментальное и растущее значение коллекций культур не только для сохранения генофонда, находящегося под угрозой исчезновения (и, следовательно, биоразнообразия), но и в качестве основного поставщика материала для вышеупомянутых процессов.
Повторное культивирование, часто используемое в качестве рутинного метода сохранения грибов, не очень практично для хранения большого количества культур. Оно требует больших временных затрат, подвержено загрязнению и не предотвращает генетические и физиологические изменения во время длительного использования [28].
В связи с этим целью данной работы стало получение биологически активных веществ из чистых культур базидиомицетов с последующим изучением метода длительного хранения данных культур с применением метода агаровых дисков.
Для достижения цели были поставлены следующие задачи:
1. Культивировать несколько чистых культур, используя разные методы посева;
2. Исследовать морфолого-биологические особенности чистых культур базидиомицетов на питательных средах;
3. Оценить возможные различия по характеру и скорости прироста биомассы выбранных базидиомицетов;
4. Выделить и изучить чистые биологически активные вещества, а также их смесь, из выбранной чистой культуры грибов.

Весь текст будет доступен после покупки

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
1.1 Тип Basidiomycota
Basidiomycota – это монофилетическая группа, насчитывающая более 40 000 известных живых видов, что составляет примерно одну треть всех грибов, однако молекулярные и генетические исследования показывают, что в этой группе еще предстоит обнаружить еще большее разнообразие. Сюда относятся патогенная головня растений, ржавчина, а также шляпочные грибы и дрожжи.
Базидиомикоты вносят важный вклад в функционирование экосистемы на нескольких уровнях, участвуя в круговороте питательных веществ, и помимо этого являются основными разрушителями различных компонентов древесины, включая лигнин [15, 38].
Большинство видов размножаются половым путем с помощью булавовидного спороносного органа (базидия), который обычно дает половые споры (базидиоспоры).
Обильный рост базидиомицетов наблюдается в сезон дождей, когда условия окружающей среды, такие как температура, относительная влажность и солнечный свет, благоприятны, что помогает им разрушать мертвые органические ткани. Это потенциальные показатели качества окружающей среды. Многие мясистые грибы съедобны и безвредны, и лишь немногие ядовиты [13, 52].

Весь текст будет доступен после покупки

1. Базидиомицеты – возбудители хронических гнилей деревьев ботанического сада Петра Великого ботанического института имени В. Л. Комарова РАН: диагностика, биология, распределение по территории / И. В. Змитрович [и др.] // Hortus Botanicus. – 2018. – Т. 13, № 13. – С. 182-204.
2. Билай В. И. Методы экспериментальной микологии. Справочник / В. И. Билай // Наукова думка. –1982. – C. 334.
3. Бондарцева М. А. Эколого-биологические закономерности функционирования ксилотрофных базидиомицетов в лесных экосистемах / М. А. Бондарцева // Грибные сообщества лесных экосистем. – 2000. – С. 9-25.
4. Бухало А. С. Высшие съедобные базидиомицеты в чистой культуре: монография / А. С. Бухало // Наукова Думка. – 1988. – С. 144.
5. Глубинное культивирование мицелия базидиомицетов: получение белковых пищевых и кормовых продуктов / П. В. Миронов [и др.] // Новые достижения в химии и химической технологии растительного сырья: материалы VII Всероссийской конференции с международным участием. – 2017. – С. 381-383.
6. Глубинное культивирование серно-желтого трутовика с целью получения белковой биомассы / О. В. Киселева [и др.] // Химия растительного сырья. – 2011. – №4. – С. 337-338.
7. Ильина Г. В. Ксилотрофные базидиомицеты в чистой культуре / Г. В. Ильина, Д. Ю. Ильин // Монография. – 2013. – С. 222.
8. Использование методов оптимизации питательных сред для выявления штаммов базидиомицетов, активно утилизирующих липиды / А. В. Барков [и др.] // Башкирский химический журнал. – 2013. – Т. 20. –№ 4. – С. 98-104.
9. Косогова Т. А. Штаммы базидиальных грибов юга Западной Сибири – перспективные продуценты биологически активных препаратов: автореферат / Т. А. Косогова. – Кольцово: ФБУН ГНЦ ВБ «Вектор». – 2013. – С. 26.
10. Культивирование мицелия и изучение фитопатогенности некоторых ксилотрофных базидиомицетов в условиях in vitro / Э. В. Марамохин [и др.] // Экология растений. – 2020. – № 2. – С. 12-18.
11. Марамохин Э. В. Изучение лесных фитопатогенов группы ксилотрофных базидиомицетов на примере Piptoporus betulinus (Bull.) P. Karst. и Phellinus igniarius (L.) Quеl. в культуре in vitro / Э. В. Марамохин, К. В. Малахова // Инженерные кадры – будущее инновационной экономики России. – 2018. – № 2. – С. 74-77.
12. Марамохин Э. В. Особенности культивирования ксилотрофного базидиомицета Piptoporus betulinus (Bull.) P. Karst. на синтетических питательных средах в условиях in vitro / Э. В. Марамохин // Инновационные подходы к развитию науки и производства регионов: Сб. науч. тр. научно-практической конференции. – 2019. – С. 97-99.
13. Морфологические особенности базидиального гриба Laetiporus sulphureus в поверхностной и глубинной культуре / О. В. Киселева [и др.] // Вестник Красноярского Государственного аграрного университета. – 2012. – №1. – С. 91-95.
14. Перспективы получения биологически активных веществ из культуры ткани некоторых ксилотрофных базидиомицетов / Э. В. Марамохин [и др.] // Роль метаболомики в совершенствовании биотехнологических средств производства. – 2019. – С. 159-162.
15. Получение плодовых тел и глубинного мицелия Lentinus edodes (Berk.) Sing / Е. А. Александрова [и др.] // Микробиология. – 1998. – Т. 67., № 5. – С. 649-654.
16. Сакович В. В. Базидиомицеты как источники биологически активных веществ / В. В. Сакович, Д. Д. Жерносеков // Вестник национальной академии наук Беларуси. – 2018. – № 1. – С. 3-13.
17. Сафонов М. А. Субстратная специализация ксилотрофных грибов, как фактор, определяющий их расселение / М. А. Сафонов, Г. М. Устинова // Вертикаль: вестник молодой науки Урала. – 1997. –Т. 2, № 1. – С. 128-130.
18. Семенов С. М. Лабораторные среды для актиномицетов и грибов / С. М. Семенов // Справочник. – 1990. – С. 240.
19. Теплякова Т. В. Высшие грибы Западной Сибири – перспективные объекты для биотехнологии лекарственных препаратов / Т. В. Теплякова, Т. А. Косогова // Диссертация. – 2014. – С. 298.
20. Технология получения биологически активной субстанции лекарственного гриба кориола опушенного / Е. С. Горшина [и др.] // Биотехнология. – 2003. – № 2. – С. 45-53.
21. Тищенко Е. В. Разработка технологии глубинного культивирования гриба Trichophyton verrucosum: автореферат / Е. В. Тищенко // МГАВМиБ им. Скрябина. – 2010. – С. 21.
22. Топология мицелия Fomes fomentarius, Fomitopsis pinicola, Piptoporus betulinus и сопутствующих им грибов и бактерий в древесном субстрате березы / О. В. Камзолкина [и др.] // Микология и фитопатология. – 2012. – Т. 46, № 3. – С. 210-216.
23. Чхенкели В. А. Основы технологии получения продуктов биотехнологии методом жидкофазной ферментации базидиального гриба Trametes pubescens (Shumach.) Pilat / В. А. Чхенкели, Л. Г. Чхенкели // Вестник ИрГСХА. – 2009. – Т. 33. – С. 49-58.
24. Экологические аспекты лабораторного культивирования природных изолятов ксилотрофных базидиомицетов, распространенных в Пензенской области и перспективных в биотехнологии / Д. Ю. Ильин [и др.] // Нива Поволжья. – 2015. – Т. 37, № 4. – С. 44-53.
25. A polysaccharide from Ganoderma atrum improves liver function in type 2 diabetic rats via antioxidant action and short-chain fatty acids excretion / K. Zhu [et. al] // Journal of agricultural and food chemistry. – 2016. – V. 64. – P. 1938-1944.
26. Anke T. Secondary metabolites from mushrooms / T. Anke // The Journal of antibiotics. – 2020. – V. 73. – P. 655-656.
27. Antibacterial and antifungal potential of wild basidiomycete mushroom Ganoderma applanatum / A. Klaus [et. al] // Lekovite sirovine. – 2017. – V. 36. – P. 37-46.
28. Anticancer effect of fraction isolated from medicinal Birch polypore mushroom, Piptoporus betulinus (Bull.: Fr.) P. Karst. (Aphyllophoromycetideae): in vitro studies / M. K. Lemieszek [et. al] // International Journal of Medicinal Mushrooms. – 2009. – V. 11, № 4. – P. 351-364.
29. Anti-inflammatory phenolic metabolites from the edible fungus Phellinus baumii in LPS-Stimulated RAW 264.7 cells / S. Lee [et. al] // Molecules. – 2017. – V. 22. – P. 1583.
30. Anti-microbial potential, identification and phylogenetic affiliation of wild mushrooms from two sub-tropical semi-evergreen Indian forest ecosystems / Lallawmsanga [et. al] // PLoS One. – 2016. – V. 11. – P. e0166368.
31. Antioxidant activities of extracts from five edible mushrooms using different extractants / S. Boonsong [et. al] // Fungal diversity – 2016. – V. 50. – P. 89-97.
32. Antiviral activity of total polysaccharide fraction of water and ethanol extracts of Pleurotus pulmonarius against the influenza A virus / T. N. Ilyicheva [et. al] // Fungal diversity. – 2020. – V. 10. – P. 224-235.
33. Apoptosis and anti-cancer drug discovery: the power of medicinal fungi and plants / J. H. Wong [et. al] // Current medicinal chemistry. – 2018. – V. 25. – P. 5613-5630.
34. Bentil J. A. Biocatalytic potential of basidiomycetes: Relevance, challenges and research interventions in industrial processes / J. A. Bentil // Scientific African. – 2011. – V. 11. – P. e00717.
35. Bioactive constituents and pharmacological activities / U. Azeem // Fungi for human health. – 2020. – P. 59-95.
36. Bioactive mushroom polysaccharides as antitumor: an overview / U. Pandya [et. al] // Natural product research. – 2019. – V. 33. – P. 2668-2680.
37. Bioactive mushroom polysaccharides: immunoceuticals to anticancer agents / L. Zhang [et. al] // Journal of nutraceuticals and food science. – 2017. – V. 2. – P. 6-10.
38. Bioactivities and health benefits of mushrooms mainly from China / J. J. Zhang [et. al] // Molecules. – 2016. – V. 21. – P. 938.
39. Biocontrol properties of Basidiomycetes: An overview / S. Sivanandhan [et. al] // Journal of fungi. – 2017. – V. 3, № 1. – P. 2.
40. Bio-functional components in mushrooms, a health opportunity: ergothionine and Huitlacohe as recent trends / A. G. Martinez-Medina [et. al] // Journal of functional foods. – 2021. – V. 77. – P. 104326.
41. Biological activity potentials of Amanita species / M. Sevindik [et. al] // Proceeding at international conference Eurosia mycology congress.
42. Burdon J. J. Spatial and temporal patterns in coevolving plant and pathogen associations / J. J. Burdon, P. H. Thrall // The American Naturalist. – 1999. – V. 153, № 5. – P. 15-33.
43. Butt A. H. CanLect-Pred: a cancer therapeutics tool for prediction of target cancer lectins using experiential annotated proteomic sequences / A. H. Butt, Khan Y. D. // IEEE Access. – 2019. – V. 8. – P. 9520-9531.
44. Cevasco M. Microbial eukaryotic diversity and function within the human gut microbiota / M. Cevasco // Comprehensive gut microbiota. – 2022. – P. 127-142.
45. Chapter six – Multiple approaches to phylogenomic reconstruction of the fungal kingdom / G. P. Charley // Advances in Genetics. – 2017. – V. 100. – P. 211-266.
46. Chemical composition and anti-inflammatory and antioxidant activities of extracts from cultivated morel mushrooms, species of genus Morchella (Ascomycota) / A. A. Dissanayake [et. al] // International journal of medicinal mushrooms. – 2021. – V. 23. – P. 73-83.
47. Chemical composition, nutritional profile and in vivo antioxidant properties of the cultivated mushroom Coprinus comatus / N. Stilinovic [et. al] // Royal society open science. – 2020. – V. 7. – P. 200900.
48. Cordycepin for health and wellbeing: a potent bioactive metabolite of an entomopathogenic medicinal Fungus Cordyceps with its nutraceutical and therapeutic potential / S. A. Ashraf [et. al] // Molecules. – 2020. – V. 25, № 2735.
49. Cultivation and utility of Piptoporus betulinus fruiting bodies as a source of anticancer agents / M. Pleszczynska [et. al] // World Journal of Microbiology and Biotechnology. – 2016. – V. 32, № 9. – P. 151.
50. Cultivation of edible mushrooms (Agaricus bisporus) in the laboratory and determination of proximate and mineral compositions of cultivated mushrooms with other protein sources / S. A. Golmwen [et. al] // International journal of recent scientific research. – 2019. – V. 10. – P. 30514-30516.
51. Dasgupta A. Mushrooms: an emerging resource for therapeutic terpenoids // A. Dasgupta, K. Acharya // Biotech. – 2019. – V. 9. – P. 369.
52. Distinguishing commercially grown Ganoderma lucidum from Ganoderma lingzhi from Europe and East Asia on the basis of morphology, molecular phylogeny, and triterpenic acid profiles / F. Hennicke [et. al] // Phytochemistry. – 2016. – V. 127. – P. 29-37.
53. Draft genome sequence of Xylaria hypoxylon DSM 108379, a ubiquitous fungus on hardwood / E. Büttner [et. al] // Microbiology resource announcements. – 2019. – V. 8. – P. 9-11.
54. Effects of Ganoderma lucidum polysaccharides on chronic pancreatitis and intestinal microbiota in mice / K. Li [et. al] // International journal of biological macromolecules. – 2016. – V. 93. – P. 904-912.
55. Eliuz E. A. E. Morel culture study part I: Morchela sp. mycelial growth and nutrient-primed mycelia / E. A. E. Eliuz, G. Goksen // Applied microbiology and biotechnology. – 2017. – V. 5. – P. 066-069.
56. Elkhateeb W. A. Medicinal mushrooms as a new source of natural therapeutic bioactive compounds / W. A. Elkhateeb, G. M. Daba // Egyptian pharmaceutical journal. – 2019. – V. 18. – P. 88-101.
57. Evaluation of umami taste in mushroom extracts by chemical analysis, sensory evaluation, and an electronic tongue system / C. Phat [et. al] // Food chemistry. – 2016. – V. 192. – P. 1068-1077.
58. Extraction, structural characterisation and immune modulatory properties of edible Amanita hemibapha subspecies javanica (Corner and Bas) mucilage polysaccharide as a potential of functional food / U. Surayot [et. al] // Journal of fungi. – 2021. – V. 7. – P. 683.
59. Fatty acid profiles in wild mushroom species from Anatolia / T. Tel-Cayan [et. al] // Chemistry of natural compounds. – 2017. – V. 53. – P. 351-353.
60. Ghosh K. A review: edible mushrooms as source of dietary fiber and its health effects / K. Ghosh // Journal of physical therapy science. – 2016. – V. 21. – P. 129-137.
61. Habtemariam S. Trametes versicolor (Synn. Coriolus versicolor) polysaccharides in cancer therapy: targets and efficacy / S. Habtemariam // Biomedicines. – 2020. – V. 8, № 5. – P. 135.
62. He M.-Q. Outline of Basidiomycota / M.-Q. He, R.-L. Zhao // Encyclopedia of Mycology. – 2021. – V. 1. – P. 310-319.
63. Heat treatment of Reishi medicinal mushroom (Ganoderma lingzhi) basidiocarp enhanced its β-glucan solubility, antioxidant capacity and lactogenic properties / A. Kiss [et. al] // Foods. – 2021. – V. 10, № 2015.
64. Homolka L. Preservation of live cultures of basidiomycetes – Recent methods / L. Homolka // Fungal biology. – 2014. – V. 118. – P. 107-125.
65. Immunomodulatory effects of edible and medicinal mushrooms and their bioactive immunoregulatory products / S. Zhao [et. al] // Journal of fungi. – 2020. – V. 6. – P. 269.
66. In vitro fermentation of sulphated polysaccharides from E. prolifera and L. japonica by human fecal microbiota / Q. Kong [et. al] // International journal of biological macromolecules. – 2016. – V. 91. – P. 867-871.
67. In vitro study of antifungal activity of Lentinus edodes mushroom extract against Alternaria triticina / P. Kumari [et. al] // Biotechnology and biological sciences: proceedings of the 3rd international conference of biotechnology and biological sciences. – 2019. – V. 392. – P. 8-10.
68. In vivo fermentation of a Pleurotuseryngii polysaccharide and its effects on fecal microbiota composition and immune response / G. Ma [et. al] // Food function. – 2017. – V. 8. – P. 1810-1812.
69. Inonotus obliquus polysaccharide regulates gut microbiota of chronic pancreatitis in mice / Y. Hu [et. al] // AMB Express. – 2017. – V. 7, № 39.
70. Insights of medicinal mushroom (Ganoderma lucidum): prospects and potential in India / A. Bijalwan [et. al] // International journal of biodiversity and conservation. – 2020. – V. 202-209.
71. Investigation on mycelial growth requirements of Cantharellus cibarius under laboratory conditions / S. Deshaware [et. al] // Archives of microbiology. – 2021. – V. 203. – P. 1539-1545.
72. Isolation, structural characterization and bioactivities of polysaccharides and its derivatives from Auricularia: a review / J. Miao [et. al] // International journal of biological macromolecules. – 2020. – V. 150. – P. 102-113.
73. Krupodorova T. A. Alternative substrates for higher mushrooms mycelia cultivation / T. A. Krupodorova, V. Y. Barshteyn // Journal of BioScience & Biotechnology. – 2015. – V. 4, № 3. – P. 339-347.
74. Leviu L. Anatomical study of the decay caused by the white-rot fungus Trametes trogii (Aphyllophorales) in wood of Salix and Populus / L. Leviu, M. A. Castro // IAWA journal. – 1998. – V. 19, № 2. – P. 169-180.
75. Mass spectrometry-based untargeted metabolomics and α-glucosidase inhibitory activity of Lingzhi (Ganoderma lingzhi) during the developmental stages / D. Satria [et. al] // Molecules. – 2019. – V. 24. – P. 2044.
76. Medicinal fungi: a source of antiparasitic secondary metabolites / J. Lenzi [et. al] // Applied microbiology and biotechnology. – 2018. – V. 102. – P. 5791-5810.
77. Medicinal mushrooms: bioactive compounds, use and clinical trials / G. Venturella [et. al] // International journal of molecular sciences. – 2021. – V. 22. – P. 634.
78. Mushroom heteropolysaccharides: a review on their sources, structure and biological effects / A. C. Ruthes [et. al] // Carbohydrate polymers. – 2016. – V. 136. – P. 358-375.
79. Mushroom nutraceuticals for improved nutrition and better human health: a review / H. Rathore [et. al] // Pharma Nutrition. – 2017. – V. 5. – P. 35-46.
80. Mushroom secondary metabolites: chemistry and therapeutic applications / D. Prajapati [et. al] // International journal of pharmaceutical sciences and research. – 2021. – V. 12. – P. 5677-5689.
81. Mycelial growth and antimicrobial activity of species of genus Lentinus (Agaricomycetes) from Brazil / T. A. Castillo [et. al] // International journal of medicinal mushrooms. – 2017. – V. 19. – P. 1135-1143.
82. Niazi A. R. Different ways to exploit mushrooms: a review / A. R. Niazi, A. Ghafoor // All Life. – 2021. – V. 14. – P. 450-460.
83. Nutritional, medicinal and cosmetic value of bioactive compounds in button mushroom (Agaricus bisporus): a review / M. Usman [et. al] // Applied sciences. – 2021. – V. 11. – P. 5943.
84. Olawale A. F. Fungi: a review on mushrooms / A. F. Olawale, N. O. M. Muhammed // Proceeding on ist international conference on science and education sustainable development. – 2017. – P. 18-31.
85. Performance of MALDI-TOF MS platforms for fungal identification / C. Cassagne [et. al] // Mycoses. – 2016. – V. 59. – P. 678-690.
86. Persson H. Mushrooms / H. Persson // Medicine. – 2016. – V. 44. – P. 16-119.

Весь текст будет доступен после покупки